运输及储存：常温运输，4 度储存
操作方法：
注意：开始仔细阅读整个操作说明。建议在使用将蛋白酶抑制剂加在缓冲液 A 和 PBS 中（蛋白酶抑制剂
终浓度为 1x，例 100x 蛋白酶抑制剂，1ml 缓冲液 A 液中加 10ul 蛋白酶抑制剂）。本试剂盒操作体系低可
降至 50mg 起始样本。缓冲液 A 和缓冲液 B 使用需冰上预冷。
1. 将 100-150mg 新鲜/冷冻的植物嫩叶加到离心管柱套管中，折叠卷曲叶片将其塞入到离心管柱中。加入
100ul 缓冲液 A，用 200ul 吸头按压叶片 100-200 次以压缩叶片体积（此步大概需要 2-3min）。
2. 用研磨棒的平头端反复向下按压扭转研磨 100-200 次（大约 2-3min）。（注意：研磨棒可重复使用，用 70%
酒精擦拭或用蒸馏水冲洗干净，用纸巾擦干即可。）
3. 再加 300ul 缓冲液 A 到离心柱中，用 200ul 吸头将样品搅拌混匀。盖上盖子，1,500Xg 离心 5min。（可选
优化：离心后，将接收管中 200ul 上清转回离心管柱上重复研磨，可增加终产量）。弃去离心管柱，如
需分离胞浆及微粒体组分，将收集管中的上清转移到一个新的 1.5ml 离心管中放到冰上备用（见下面 4A
步骤，如不分离可弃掉），沉淀用 1ml 预冷的 PBS 吹打重悬，然后 1,200Xg 离心 5min。弃掉上清，加入
1ml 缓冲液 A 吹打重悬沉淀，同时添加 20ul 缓冲液 B，大力涡旋振荡 10-20s，确定沉淀全复溶用于完
整的细胞核分离（见 4B 步骤）。
以下操作步骤根据实验需求选择，如需分离胞浆及微粒体组分，从 4A 步骤开始，如仅需细胞核组分，从 4B
步骤开始。
4A. 分离细胞浆和微粒体组分：
第 3 步所得上清 4,000Xg 离心 10min（沉淀主要为破碎的叶绿体）。将上清转移到一个新的 1.5ml 离心管
中，16,000Xg 离心 30min。（上清是胞浆组分，沉淀是已经去除大部分细胞核及叶绿体的微粒体组分即：
细胞器和质膜组分）
4B. 分离细胞核:
a. 将第 3 步重悬的沉淀在冰上孵育 5min，1,200Xg 离心 5min。
b. 全去除上清，沉淀用 200ul 预冷的 PBS 移液器上下吹打 30-40 次重悬备用。
c. 将 1.2ml 缓冲液 C 加到一个新1.5ml 离心管中，将步骤 b 中 PBS 重悬的沉淀用移液器小心贴着管
壁缓慢吹出到 C 液上方。
d. 1,200Xg，离心 5min，离心后清晰可见一个白色或浅绿色沉淀以及绿色上清。将上清全去除干净，
用 0.5ml 预冷 PBS 清洗沉淀（沉淀为分离的完整细胞核）。细胞核可以根据下游实验复溶在合适的溶
解液中。例如：蛋白抽提实验，可以将核用 50-100ul 含有表面活性剂的裂解液裂解，得到的蛋白可以
进行 WB 检测，ELISA 或者 IP（详见下表以及技术说明）。测定蛋白浓度，推荐使用 BCA 法。如果
下游是做流式检测分析可以用 0.2-0.5ml 含 5%BSA 的 PBS 重悬细胞核。核酸提取，可用 Tris 缓冲液
或者其他合适的细胞核缓冲液重悬。
技术说明：
1. 本试剂盒对幼嫩的植物叶片有效，但也适用于其他软组织，如种子、外壳和软茎。对于非叶片软组织，
将其切割成 1 x 1 mm 或更小的碎片，按照操作步骤进行即可。非叶片组织获取的细胞核的纯度通常不如
叶片组织。在大多数情况下，主要污染物是质体（plastids）而不是叶绿体。
2. 如果分离的细胞核有明显的绿色，用 0.5ml PBS 加 20ul 缓冲液 B 重悬细胞核，冰上孵育 10min，1,000Xg
离心 5min 收集清洗过的细胞核。
3. 说明书中样品起始量对于大多数样品而言得率是足够的。样品不要超过200mg，并非样品越多结果越好。
4. 从分离的细胞核沉淀中提取蛋白，如使用 WA-009 溶解液（参照下面表格），加入 50ul 蛋白溶解液后，
需加入 40-50mg 试剂盒中提供的蛋白分离粉到管底部，用试剂盒中研磨棒尖头用力研磨 100-200 次。
再补加 50ul WA-009 溶解液，8,000Xg 离心 5min，上清为分离出来的核蛋白溶液。蛋白得率通常在 20-
50ug/样品。如果需要更多的蛋白，可将多管分离的核合并在一起再提取蛋白即可。
