线粒体复合体Ⅰ试剂盒

                                     分光光度法25管/24样

注   意 ：正式测定务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

复合体Ⅰ（EC 1.6.5. 3）又称NADH-CoQ 还原酶或NADH脱氢酶，广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体中，是线粒体内膜中大的蛋白复合物。该酶催化一对电子从NADH传递给CoQ，同时可使O₂还原生成O^2.-，是呼吸电子传递链上产生O^2.-的主要部位。测定该酶活性，不仅可以反映呼吸电子传递链（ETC）状态，而且可以反映活性氧（ROS）生成状态。

测定原理：

复合体Ⅰ能够催化NADH脱氢生成NAD⁺，在340nm下测定NADH的氧化速率计算出该酶活性的大小。

需自备的仪器和用品：

紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制：

试剂一：25mL×1瓶，-20℃保存；

试剂二：5mL×1瓶，-20℃保存；

试剂三：0.5 mL×1瓶，-20℃保存；

试剂四：25mL×1瓶，-20℃保存；

试剂五：1 mL×1支，-20℃保存；

试剂六：粉剂×1支，-20℃保存，用时加入2mL蒸馏水；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

工作液的配制：临用将试剂五转移到试剂四中混合溶解；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

样本的处理：

组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：

① 准确称取0.1g组织或收集500万细菌或细胞，加入1mL试剂一和10uL 试剂三，用冰浴匀浆器或研钵匀浆。

② 将匀浆600g，4℃离心5min。

③ 弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，11000g，4℃离心10min。

④ 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白，可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅰ（此步可选做）。

⑤ 步骤④中的沉淀即为线粒体，加入200uL试剂二和2uL 试剂三，超声波破碎（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10，重复30次），用于复合体Ⅰ酶活性测定。

测定步骤：

1、 分光光度计预热30min以上，调节波长至340nm，蒸馏水调零。

2、 样本测定

（1）工作液于37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）孵育5min。

（2）在1mL石英比色皿中加入40μL样本、800μL工作液和60μL试剂六，立即混匀，记录340nm处

初始吸光值A1和 2min后的吸光值A2，计算ΔA=A1-A2。

复合体Ⅰ活力单位的计算

（1）按蛋白浓度计算

单位的定义：每mg组织蛋白每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。

 复合体Ⅰ活力（nmol/min/mg prot）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×10⁹]÷(V样×Cpr) ÷T=1808×ΔA÷Cpr

此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

（2） 按样本鲜重计算

单位的定义：每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。

 复合体Ⅰ活力（nmol/min/g 鲜重）=[ΔA×V反总÷（ε×d）×10⁹]÷(W× V样÷V样总) ÷T=365×ΔA÷W

（3） 按细菌或细胞密度计算

单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。

复合体Ⅰ活力(nmol/min/10⁴ cell)=[ΔA×V反总÷（ε×d）×10⁹]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.73×ΔA

V反总：反应体系总体积，9×10^-4 L；ε：NADH摩尔消光系数，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V样：加入样本体积，0.04 mL；V样总：加入提取液体积，0.202 mL；T：反应时间，2 min；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500万。

原创作者：上海雅吉生物科技有限公司